in vivo において、ほぼすべての細胞が複雑な 3D 構造からなる細胞外基質（ECM）にかこまれており、生化学的シグナルを介して隣接細胞と相互作用します¹。このため、この構造や組織を模倣できない細胞培養環境には制限があります。平面の 2D 環境で培養した細胞は、細胞形態、生存率、分化、増殖などの特性が変化することがよくあります。

2D 細胞培養には限界があるため、研究が中断したり、前臨床での細胞ベースの薬剤および毒性スクリーニングアッセイの結果による予測が不十分なものになったりすることがあります。また、有効性を欠く腫瘍生物学モデル、前臨床薬剤開発研究での動物モデル併用への依存などの問題もあります。

3D 細胞培養によって細胞間および細胞-ECM 間の生物学的相互作用を確立することで、特に幹細胞培養、がん研究、薬剤および毒性スクリーニング、生体組織工学などのアプリケーションにおいて、天然の組織の特異性を模倣できることを示す強力な証拠が報告されています。

2D 培養と 3D 培養における細胞の大きな違いはその形態です。細胞は、ECM に対するインテグリン介在細胞接着の向きに基づいた形状に安定するため、2D 培養の接着は細胞の片面で発生します。対照的に、3D 培養の接着は細胞の表面全体で発生します²。このため、3D 培養モデルでは細胞の伸展と接着に時間がかかり、場合によっては数日間かかることもあります。これは、細胞の増殖、アポトーシス、分化に直接影響を与える可能性があります^3-6。3D 環境で培養した場合、細胞の種類によっては生理学的形態や機能を回復できることもあります⁷。

細胞の機能性もこの形態調整に影響され、3D 環境で培養した細胞の特性は、in vivo で観察されるものにより近いものとなります^8、9。したがって、基本的に 3D 細胞培養モデルでは in vivo 環境を模倣できるため、in vivo 様の挙動と機能性を示す細胞の増殖と分化が可能になります。

3D 細胞培養モデルで細胞の挙動を正確に予測するためには、in vivo 細胞の挙動を正確に再現する必要があります。これは様々な分野の研究応用に当てはまります。この再現を実現するために、3D 細胞培養モデルでは通常、ハイドロゲルをベースにしたマトリックス、または合成スキャフォールドが必要になります。3D 細胞培養を成功させるために最も一般的に使用されているのが、天然由来の ECM ベースのハイドロゲルです。

ハイドロゲルと ECM は、3D 細胞培養に極めて有効なマトリックスです。天然組織と非常によく似た特性を持ち、一般的に天然材料に由来するこれらのゲルは、生体適合性と生物活性に優れているため、細胞の機能が促進されます¹⁰。また、合成ハイドロゲルや合成スキャフォールドの使用も 3D 細胞培養に有効な方法です。 

3D 細胞培養では、細胞スフェロイドも使用されます。3D スフェロイド培養は、接着細胞の凝集性によって形成されるシンプルなモデルで、幅広い種類の細胞から作製できます。スフェロイドは、固形組織の様々な側面を自然に模倣するため、腫瘍研究のツールとして効果的です。また、通常、多能性幹細胞（PSC）の分化によってもスフェア構造が形成されるため、スフェロイドは優れた生理学的 3D モデルとして使用できます。

初めて 3D アッセイを開発する場合、または既存の 3D モデルをハイスループットへスケールアップする場合など、コーニングはあらゆる段階で信頼性の高い細胞培養ソリューションと広範なサポートネットワークを提供いたします。 

初めての細胞培養フラスコを開発して以来、コーニングは細胞培養のための革新的製品を提供してきました。こういった革新に対する当社の取り組みは、揺らぐことはありません。30 年前に開発され、現在では最先端の 3D マトリックスとして業界をリードする Corning^® マトリゲル基底膜マトリックスや、均一かつ再現可能な 3D 多細胞スフェロイド形成を可能にする超低接着表面のスフェロイドマイクロプレートのような画期的な技術など、コーニングは、革新的な 3D 細胞培養ソリューションを構築することで、研究全体にわたって in vivo 様の挙動と機能性を示す細胞増殖の最適な環境作りに取り組んできました。

サポート情報

1.     Lodish H, et al. Molecular Cell Biology. New York W.H. Freeman and Company (2002).
2.     Baker BM and Chen CS. J. Cell Sci. 125(13):3015-3024 (2012).
3.     Singhvi R, et al. Science 264:696-698 (1994).
4.     Chen CS, et al. Science 276:1425-1428 (1997).
5.     Thomas CH, et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 99:1972-1977 (2002).
6.     McBeath R, et al. Dev. Cell 6:483-495 (2004).
7.     Benya PD and Shaffer JD. Cell 30:215-224 (1982).
8.     Debnath J and Brugge JS. Nat. Rev. Cancer 5:675-688 (2005).
9.     Nelson CM and Bissell MJ. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 22:287-309 (2006).
10.  Dawson E, et al. Adv. Drug. Deliv. Rev. 60(2):215-228 (2008).